Solutions de coloration histologique : prêtes à l'emploi et fiables |
La gamme de Merck pour la microscopie inclut des colorants spéciaux pour les méthodes fréquemment employées, telles que H&E (hématoxyline-éosine), PAS (acide periodique de Schiff) et de van Gieson. Nos solutions pour l'histologie permettent des méthodes de coloration plus pratiques, car elles sont fournies dans un format prêt à l'emploi et évitent tout contact direct avec des colorants secs. Leur homogénéité d'un lot à l'autre augmente la reproductibilité des résultats, ce qui est essentiel pour les audits des laboratoires. Toutes nos solutions de coloration sont des dispositifs médicaux de diagnostic in vitro (IVD) certifiés CE qui sont accompagnés d'une documentation complète de leur qualité et de leur procédé de fabrication.
La coloration à l'hématoxyline-éosine (H&E) est la méthode de détection la plus couramment employée en histologie. La coloration nucléaire s'effectue en utilisant soit de l'hémalun en solution selon Mayer, soit la solution d'hématoxyline modifiée selon Gill III. La contre-coloration est effectuée avec de l'éosine Y en solution aqueuse à 0,5 %, avec de l'éosine Y en solution alcoolique à 0,5 % ou 1 %, ou encore avec de l'éosine-phloxine en solution alcoolique. Tous nos colorants H&E sont prêts à l'emploi et ne requièrent aucune filtration préalable. Ils offrent également une efficacité élevée et des résultats reproductibles avec une différenciation brillante.
La solution de Giemsa est fréquemment utilisée en histologie pour colorer du matériel particulier, tel que la moelle osseuse, les amygdales et les ganglions lymphatiques. Les caractéristiques morphologiques des différentes cellules sont parfaitement visualisées. Les noyaux cellulaires sont colorés en bleu, tandis que toutes les autres structures apparaissent dans différents tons de rouge. La coloration de Giemsa peut également être utilisée pour détecter Helicobacter pylori dans des échantillons de tissu gastrique.
La coloration PAS est utilisée en histologie pour détecter les mucopolysaccharides, le glycogène, les muco- et les glycoprotéines, les glyco- et les phospholipides, les membranes basales et le collagène. Le spécimen est tout d'abord traité avec de l'acide periodique, ce qui oxyde les 1,2-glycols en groupes aldéhydes. Puis le réactif de Schiff réagit avec les aldéhydes, en les colorant d'une couleur rouge vif. Notre réactif de Schiff présente l'avantage de pouvoir être stocké à température ambiante et utilisé dès sa sortie du flacon sans étape supplémentaire.
La combinaison de la coloration PAS avec le bleu alcian permet en plus l'identification des mucosubstances acides à pH 2,5. Lorsque la solution de bleu alcian prête à l'emploi est appliquée à des spécimens pré-colorés avec PAS, les noyaux apparaissent en bleu, les mucosubstances acides sont de couleur bleu clair, et les polysaccharides et les mucopolysaccharides neutres sont colorés en violet. Si le bleu alcian est utilisé avec une solution de Rouge nucléaire rapide, les mucosubstances acides peuvent être identifiées sans différenciation des groupes carboxyle et sulfate.
|