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Konfigurierbare Panels & Premixed-Kits
Unser breites Angebot enthält Multiplex-Panels, für die Sie die Analyten auswählen können, die am besten für Ihre Anwendung geeignet sind. Unter einem separaten Register können Sie das Premixed-Cytokin-Format oder ein Singleplex-Kit wählen.
Kits für die zelluläre Signaltransduktion & MAPmates™
Wählen Sie gebrauchsfertige Kits zur Erforschung gesamter Signalwege oder Prozesse. Oder konfigurieren Sie Ihre eigenen Kits mit Singleplex MAPmates™.
Die folgenden MAPmates™ sollten nicht zusammen analysiert werden: -MAPmates™, die einen unterschiedlichen Assaypuffer erfordern. -Phosphospezifische und MAPmate™ Gesamtkombinationen wie Gesamt-GSK3β und Gesamt-GSK3β (Ser 9). -PanTyr und locusspezifische MAPmates™, z.B. Phospho-EGF-Rezeptor und Phospho-STAT1 (Tyr701). -Mehr als 1 Phospho-MAPmate™ für ein einziges Target (Akt, STAT3). -GAPDH und β-Tubulin können nicht mit Kits oder MAPmates™, die panTyr enthalten, analysiert werden.
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Custom Premix Selecting "Custom Premix" option means that all of the beads you have chosen will be premixed in manufacturing before the kit is sent to you.
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96-Well Plate
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48-602MAG
Buffer Detection Kit for Magnetic Beads
1 Kit
Platzsparende Option Kunden, die mehrere Kits kaufen, können ihre Multiplex-Assaykomponenten in Kunststoffbeuteln anstelle von Packungen erhalten, um eine kompaktere Lagerung zu ermöglichen.
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Immobilon Transfermembranen, Sandwiches und Blotting-Filterpapier
Immobilon® PVDF membranes are the ideal transfer membranes for protein blotting applications.Mehr
Immobilon® PVDF membranes are the ideal transfer membranes for protein blotting applications. Weniger
Mobile Phase Preparation for UHPLC: Membrane Filtration Method Affects System Performance and Leaching of Extractable Impurities Subodh Kulkarn(1), Jesmi George(2) and Vivek Joshi(2) (1) Millipore India Pvt. Ltd., Bioscience Division, 50A, 2nd Phase, Ring Road, Peenya, Bangalore, India 560058 (2) Millipore Corp., Bioscience Division, 17 Cherry Hill Drive, Danvers, MA 01923 LCGC
2009
UHPLC/UPLC® is a revolutionary chromatography technique that is gaining wide acceptance among researchers due to improved resolution, shorter chromatographic runs, and the capability for doing fast method development. The presence of sub-2 µm particles in UHPLC columns provide these benefits but also poses challenges in sample and mobile phase preparation. Particulate impurities in the sample or mobile phase can cause backpressure buildup in the UHPLC system, causing system failure. In fact, most UHPLC instrument vendors recommend filtration of mobile phase using 0.2 µm filters, but there is a lack of data showing the benefits of filtration. In this article we describe the filtration of mobile phases through syringe filters of varying pore size and membrane type, followed by analysis by UHPLC and mass spectrometry. Our results clearly indicate that filtration of mobile phase components using the optimal membrane filter will help protect UHPLC systems from particulate impurities that may clog and shut down the system, increase the sensitivity of detection, and improve the accuracy of quantitation.
Quantitation of Protein on gels and blots by infrared fluorescence of Coomassie blue and fast green Luo S., Wehr N.B., Levine R.L. Analytical Biochemistry:350 (2006):233-238
2005
Immunoblotting (Western)
Role of the Small Heat Shock Proteins in Regulating Vascular Smooth Muscle Tone McLemore E.C., Tessier D.J., Thresher J., Komalavilas P., Brophy C.M J. Am. Coll. Surg. 2005, Vol 201 (1):30-36
2004
Pre-B-cell colony-enhancing factor is a secreted cytokine-like protein from the human amniotic epithelium. Ognjanovic S, Ku TL, Bryant-Greenwood GD. Am J Obstet Gynecol. 2005 Jul;193(1):273-82
2004
Western Blotting
A high-affinity reversible protein stain for Western blots Antharavally B.S., Carter, B., Bell, P.A., Mallia K. Analytical Biochemistry 2004,Vol 329:276-280
2004
Biochemical analysis of GABA receptor subunits alpha 1, alpha 5, beta1 beta2 in the hippocampus of patients with Alzheimer's disease neurophathology Rissman, R.A., Mishizen-Eberz A.J. N.,Wolfe, C.B.B., DeBlas A.L., Miralles C.P., Ikonomovic M.D., armstrong D.M. Neuroscience 120 (2003) 295-705
2003
Western Blotting
Proteomics reveals protein profile changes in doxorubicin treated MCF7 human breast cancer cells Cheng S.T., Pan T, L., Tsai Y.Ch, Huang C. M. Cancer letters 2002. vol 181:95-107
2002
Towards proteome-wide production of monoclonal antibody by phage display. Bin Liu, Lan Huang, Carina Sihlbom, Al Burlingame and James D. Marks. J Mol Biol. 2002 Feb 1;315(5):1063-73
2002
Mass Spectrometry Sample Prep
Characterization of retinoic acid receptor-deficient keratinocytes. Goyette Philippe; Chen Chang Feng; Wang Wei; Seguin Francois; Lohnes David(a) Journal of Biological Chemistry v 275 pg 16497-16505 June 2, 2000
1999
Protection of renal inner medullary epithelial cells from apoptosis by hypertonic stress-induced p53 activation Dmitrieva Natalia(a); Kultz Dietmar; Michea Luis; Ferraris Joan; Burg Maurice ; Journal of Biological Chemistry v 275, pg 18243-18247 June 16, 2000 Journal of Biological Chemistry v 275, pg 18243-18247 June 16, 2000
1999
Should I prewet MultiScreen Immobilon-P plates before use?
Yes. Use 15 ul of 70% ethanol or methanol to prewet the Immobilon P membrane. This membrane is hydrophobic and requires a prewet to allow liquid to pass through the membrane.
What is the protein binding capacity of Immobilon-P?
The protein (BSA) binding capacity for the Immobilon P membrane is 131 micrograms per sq. cm. of membrane.
What is the thickness of the Immobilon PSQ?
Immobilon PSQ is 200 microns thick.
Can ethanol be substituted for methanol in the Western Blot procedure?
Yes, it is acceptable to replace the methanol with ethanol as long as you substitue it 1 for 1. So 20% methanol would be replaced with 20% ethanol.
What is the smallest size of a protein or peptide which binds to the Immobilon-PSQ?
For the PSQ we do not suggest that they go lower than 2 kDa for the protein size. To help promote the transfer of the smaller proteins the methanol concentration of the transfer buffer can be increased to 20% (w/v) and the SDS lowered to 0.01%. The strength of the electric field can also be reduce by 50% to increase the proteins contact time with the membrane. Standard stains can be used such as Coomasie Blue and Ponceau. Keep in mind that some of the stain such as Coomasie Blue are not reversible.
How many times can I strip and reprobe Immobilon-P?
While 2-3 times is probably the limit, it is difficult to give an absolute number in regards to stripping and reprobing. This is because there are many factors to consider when it comes to protein binding to PVDF and primary antibody affinity to these proteins. Different proteins will have varying degrees of affinity to PVDF. This is based on factors discussed in our Protein Blotting Handbook (see TP001; Protein Binding section). One round of stripping may remove one protein and leave another intact. The same could occur when using different primary antibodies. Different antibodies will have varying affinities to different proteins. If carrying out several rounds of stripping and reprobing, one strategy might be to detect the least abundant proteins earlier leaving the higher abundant proteins later for detection.
What is the difference between Immobilon–FL and Immobilon-P?
Both membranes are made from PVDF. The difference in background fluorescence is due to proprietary modifications in the membrane manufacturing process.
How does the protein binding capacity and protein retention of Immobilon-FL compare to Immobilon-P?
Immobilon-FL’s protein binding capacity and protein retention are comparable to Immobilon-P.
Is Immobilon-FL better than Nitrocellulose membrane for Fluorescence detection?
Yes. Background fluorescence of Immobilon-FL is typically 2-5X lower than that of nitrocellulose, thus improving signal-to-noise ratio (sensitivity). Nitrocellulose membranes have other disadvantages. If allowed to dry out, they become brittle, tend to fracture and are difficult to handle. They are not recommended for stripping and re-probing. Nitrocellulose blots need to be scanned as soon as possible after detection, as diffusion of signal on a wet membrane may also occur.
What fluorescence-based detection methods can be used with Immobilon-FL?
Immobilon-FL can be used in Western blotting applications using either fluorescent dye-conjugated antibodies or chemi-fluorescence substrates. Western blots can be imaged in the visible or IR range. Single color detection or multiplexing for co-localization studies can be performed efficiently on Immobilon-FL Fluorescent proteins, e.g. green fluorescent protein, (GFP) or proteins tagged with GFP, blotted onto the membrane can be readily detected as well.
Millipore bietet drei verschiedene Immobilon PVDF-Membranen an, von denen jede für unterschiedliche Protein-Blotting-Anwen dungen optimiert ist. Wir bieten nun auch Blotting Sandwiches an, die mit vorgeschnittenen Membranblättern und Blotting-Filterpapier ausgestattet sind.
Immobilon Membranen zeigen eine Reihe von Vorteilen gegenüber Nitrocellulose. Sie reißen nicht, wellen sich nicht und können ohne Brechen geschnitten werden. Sie zeigen auch geringeren Hintergrund, eine breite Lösungsmittel kompatibilität und ein optimiertes Färbungs vermögen. Reprobing kann zudem viele Male durchgeführt werden.
Immobilon-P Membran
Porengröße 0,45 µm
Empfohlen für die meisten Western-Blotting-Anwendungen, besonders für Proteine mit einem Molekulargewicht > 20 kDa
Millipores Rapid Immunodetection Protokoll verringert die Nachweiszeiten um bis zu 2 Stunden, indem es das Blocken der Membran und mehrere Waschschritte überflüssig macht, ohne dabei an Sensitivität oder Spezifität einzubüßen.
Blotting Membranes
Blotting Membranes
Immobilon-PSQ Membran
Porengröße von 0,2 µm und große strukturinterne Oberfläche
Höhere Protein-Adsorption und bessere Ergebnisse bei der Protein-Sequenzierung als andere Membranen
Empfohlen für das Blotting von Proteinen mit einem Molekulargewicht < 20 kDa
Verhindert das Durchwandern von Proteinen mit geringem Molekulargewicht durch die Membran.
Immobilon-FL Membran
Die erste für Fluoreszenzanwendungen optimierte Transfermembran
Extrem schwacher Hintergrund verbessert die Sensitivität aller Fluoreszenz-Nachweisprotokolle.
Kompatibel mit allen herkömmlich verwendeten Fluoreszenz-Sonden bei allen Anregungs- und Emissionswellenlängen
Ideal für Multiplexing- und Chemifluoreszenz-Anwendungen
Blotting Membranes
Blotting Membranes
Blotting Sandwiches
Wenn Sie eine Vielzahl von Blots durchführen müssen, stellen Blotting Sandwiches eine praktische, zeitsparende Lösung dar. Unsere Sandwiches bestehen aus Blättern einer Immobilon-P Membran, die sich mit vorgeschnittenen Blättern eines Blotting-Filterpapiers ("chromatography-grade") abwechseln.
Blotting-Filterpapier
Blotting-Filterpapier ("chromatography-grade"), das auf die gebräuchlichsten Western-Blotting-Größen zugeschnitten ist.
Leistung
Rapid Immunodetection Protokoll mit Immobilon-P Membran
Schritt
Standard Immunodetection
Rapid Immunodetection
1. Blocken der Membran
1 h
Kein
2. Inkubation mit primärem Antikörper
1 h
1 h
3. Waschen der Membran
3 x 10 min
3 x 5 min
4. Inkubation mit sekundärem Antikörper
1 h
30 min
5. Waschen der Membran
3 x 10 min
3 x 5 min
6. Hinzufügen des Substrats
5 min
5 min
Gesamtzeit
4 h 5 min
2 h 5 min
Immobilon-PSQ Membran verhindert das Durchwandern von Proteinen durch die Membran
Molekulargewichts-Marker (Spur 1, 3, 5, 7) und Kalbsleberlysate (Spur 2, 4, 6, 8) wurden auf Immobilon-P oder Immobilon-PSQ Membranen transferiert. Ein Blatt einer Immobilon-PSQ Membran wurde hinter den primären Membranen angebracht, um durchgewanderte Proteine aufzu fangen (Spur 5 und 6 hinter Immobilon-P; Spur 7 und 8 hinter Immobilon-PSQ).
Immobilon-FL Membran ist für Fluoreszenz optimiert.
Paralleler Nachweis von Aktin und Tubulin auf Immobilon-FL Membran mit zwei unterschiedlichen fluoreszenzmarkierten Antikörpern (Multiplexing). Hasenmuskel-Aktin (rot) wurde unter Verwendung eines Hasen-Anti-Aktin-Antikörpers (1. AK) und QDot® 655 Ziegen-Anti-Hasen-Antikörpers (2. AK) nachgewiesen. Schweinehirn-Tubulin (grün) wurde unter Verwendung von Maus-Anti-Tubulin-Antikörper (1. AK) und QDot® 565 Ziegen-Anti-Maus-Antikörper (2. AK) nachgewiesen. Von beiden Analyten konnten bis zu 7 ng Protein nachgewiesen werden. Daten von Quantum Dot Corporation erstellt.
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